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  • miRNA引物設(shè)計(jì)合成

miRNA引物設(shè)計(jì)合成

貨號(hào):QW-1016-1

規(guī)格:對(duì)

價(jià)格: ¥ 400.00

  • miRNA引物設(shè)計(jì)合成
產(chǎn)品詳情

一、標(biāo)準(zhǔn)的PCR反應(yīng)體系

       10×擴(kuò)增緩沖液     10 ul

       4種dNTP混合物   各200 umol/L

       引物            各10~100 pmol

       模板DNA      0.1~2 ug

       Taq DNA聚合酶    2.5 u

       Mg2+       1.5 mmol/L

       加雙或三蒸水至    100 ul


二、PCR引物設(shè)計(jì)

       PCR反應(yīng)中有兩條引物,即5′端引物和3′引物。設(shè)計(jì)引物時(shí)以一條DNA單鏈為基準(zhǔn)(常以信息鏈為基準(zhǔn)),5′端引物與位于待擴(kuò)增片段5′端上的一小段DNA序列相同;3′端引物與位于待擴(kuò)增片段3′端的一小段DNA序列互補(bǔ)。
       1.引物設(shè)計(jì)的基本原則
      (1)  引物長度:15-30 bp,常用為20 bp左右。
      (2) 引物堿基:G+C含量以40-60%為宜,G+C太少擴(kuò)增效果不佳,G+C 過多易出現(xiàn)非特異條帶。ATGC最好隨機(jī)分布,避免5個(gè)以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。
      (3) 引物內(nèi)部不應(yīng)出現(xiàn)互補(bǔ)序列。
      (4)兩個(gè)引物之間不應(yīng)存在互補(bǔ)序列,尤其是避免3 ′端的互補(bǔ)重疊。
      (5) 引物與非特異擴(kuò)增區(qū)的序列的同源性不要超過70%,引物3′末端連續(xù)8個(gè)堿基在待擴(kuò)增區(qū)以外不能有完全互補(bǔ)序列,否則易導(dǎo)致非特異性擴(kuò)增。
      (6)引物3‘端的堿基,特別是最末及倒數(shù)第二個(gè)堿基,應(yīng)嚴(yán)格要求配對(duì),最佳選擇是G和C。

      (7) 引物的5 ′端可以修飾。如附加限制酶位點(diǎn),引入突變位點(diǎn),用生物素、熒光物質(zhì)、地高辛標(biāo)記,加入其它短序列,包括起始密碼子、終止密碼子等。

       2.引物設(shè)計(jì)軟件

       Primer Premier5.0 (自動(dòng)搜索)*、Oligo6 (引物評(píng)價(jià))、Vector NTI Suit、DNAsis、Omiga、DNAstar、Primer3 (在線服務(wù))。

三、模板的制備

      (1)PCR的模板可以是DNA,也可以是RNA。

      (2)模板的取材主要依據(jù)PCR的擴(kuò)增對(duì)象,可以是病原體標(biāo)本如病毒、細(xì)菌、真菌等。也可以是病理生理標(biāo)本如細(xì)胞、血液、羊水細(xì)胞等。法醫(yī)學(xué)標(biāo)本有血斑、精斑、毛發(fā)等。
      (3)標(biāo)本處理的基本要求是除去雜質(zhì),并部分純化標(biāo)本中的核酸。多數(shù)樣品需要經(jīng)過SDS和蛋白酶K處理。難以破碎的細(xì)菌,可用溶菌酶加EDTA處理。所得到的粗制DNA,經(jīng)酚、氯仿抽提純化,再用乙醇沉淀后用作PCR反應(yīng)模板。

四、PCR反應(yīng)條件的控制
       1.  PCR反應(yīng)的緩沖液提供合適的酸堿度與某些離子 。
       2.  鎂離子濃度總量應(yīng)比dNTPs的濃度高,常用1.5 mmol/L。

       3.  底物濃度dNTP以等摩爾濃度配制,20~200 umol/L。

       4.  TaqDNA聚合酶2.5U(100 ul)。

       5.  引物 濃度一般為0.1 ~0.5 umol/L。

       6.  反應(yīng)溫度

      (1)變性溫度和時(shí)間95℃,30 s。

      (2)退火溫度和時(shí)間 低于引物Tm值5 ℃左右,一般在45~55℃。

      (3)延伸溫度和時(shí)間72℃,1 min/kb(10 kb內(nèi))。

      (4)Tm值=4(G+C) +2(A+T)

       7.  循環(huán)次數(shù) :一般為25 ~30次。循環(huán)數(shù)決定PCR擴(kuò)增的產(chǎn)量。模板初始濃度低,可增加循環(huán)數(shù)以便達(dá)到有效的 擴(kuò)增量。但循環(huán)數(shù)并不是可以無限增加的。一般循環(huán)數(shù)為30個(gè)左右,循環(huán)數(shù)超過30個(gè)以后,DNA聚合酶活性逐漸達(dá)到飽和,產(chǎn)物的量不再隨循環(huán)數(shù)的增加而增加,出現(xiàn)了所謂的“平臺(tái)期”。


五、PCR的循環(huán)參數(shù)

       1.  預(yù)變性(Initial denaturation)
       模板DNA完全變性與PCR酶的完全激活對(duì)PCR能否成功至關(guān)重要,建議加熱時(shí)間參考試劑說明書,一般未修飾的Taq酶激活時(shí)間為兩分鐘。
       2.  循環(huán)中的變性步驟
       循環(huán)中一般95℃,30秒足以使各種靶DNA序列完全變性,可能的情況下可 縮短該步驟時(shí)間,變性時(shí)間過長損害酶活性,過短靶序列變性不徹底,易造成擴(kuò)增失敗。
        3.  引物退火(Primer annealing)
       退火溫度需要從多方面去決定,一般根據(jù)引物的Tm值為參考,根據(jù)擴(kuò)增的長度適當(dāng)下調(diào)作為退火溫度。然后在此次實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上做出預(yù)估。退火溫度對(duì)PCR的特異性有較大影響。
       4.  引物延伸
       引物延伸一般在72℃進(jìn)行(Taq酶最適溫度)。但在擴(kuò)增長度較短且退火溫度較高時(shí),本步驟可省略
       延伸時(shí)間隨擴(kuò)增片段長短而定,一般推薦在1000 bp以上,含Pfu及其衍生物的衍生設(shè)定為1 min/kbp
       5.  循環(huán)數(shù)
       大多數(shù)PCR含25-40循環(huán),過多易產(chǎn)生非特異擴(kuò)增。
       6.  最后延伸
       在最后一個(gè)循環(huán)后,反應(yīng)在72℃維持5-15分鐘.使引物延伸完全,并使單鏈產(chǎn)物退火成雙鏈。

六、PCR步驟
       1.  DNA變性
       (90℃-96℃):雙鏈DNA模板在熱作用下, 氫鍵斷裂,形成單鏈DNA。
       2.  退火
       (25℃-65℃):系統(tǒng)溫度降低,引物與DNA模板結(jié)合,形成局部雙鏈。
       3.  延伸
      (70℃-75℃):在Taq酶(在72℃左右,活性最佳)的作用下,以dNTP為原料,從引物的5′端→3′端延伸,合成與模板互補(bǔ)的DNA鏈。

七、PCR檢測(cè)
       PCR反應(yīng)擴(kuò)增出了高的拷貝數(shù),下一步檢測(cè)就成了關(guān)鍵。熒光素(溴化乙錠,EB)染色凝膠電泳是最常用的檢測(cè)手段。電泳法檢測(cè)特異性是不太高的,因此引物兩聚體等非特異性的雜交體很容易引起誤判。但因?yàn)槠浜喗菀仔校蔀榱酥髁鳈z測(cè)方法。近年來以熒光探針為代表的檢測(cè)方法,有逐漸取代電泳法的趨勢(shì)。
實(shí)驗(yàn)流程及案例展示